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瓊脂糖凝膠電泳
  • 發(fā)布日期:2018-06-25      瀏覽次數(shù):3003
    • 瓊脂糖凝膠電泳是用瓊脂或瓊脂糖作支持介質(zhì)的一種電泳方法。對于分子量較大的樣品,如大分子核酸、病毒等,一般可采用孔徑較大的瓊脂糖凝膠進行電泳分離。

       

      原理

      瓊脂糖凝膠電泳是用瓊脂糖作支持介質(zhì)的一種電泳方法。其分析原理與其他支持物電泳的主要區(qū)別是:它兼有“分子篩”和“電泳”的雙重作用。


      瓊脂糖凝膠具有網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),物質(zhì)分子通過時會受到阻力,大分子物質(zhì)在涌動時受到的阻力大,因此在凝膠電泳中,帶電顆粒的分離不僅取決于凈電荷的性質(zhì)和數(shù)量,而且還取決于分子大小,這就大大提高了分辨能力。但由于其孔徑相當大,對大多數(shù)蛋白質(zhì)來說其分子篩效應微不足道,現(xiàn)廣泛應用于核酸的研究中。


      蛋白質(zhì)和核酸會根據(jù)pH不同帶有不同電荷,在電場中受力大小不同,因此跑的速度不同,根據(jù)這個原理可將其分開。電泳緩沖液的pH在6~9之間,離子強度0.02~0.05為適。常用1%的瓊脂糖作為電泳支持物。瓊脂糖凝膠約可區(qū)分相差100 bp 的DNA片段,其分辨率雖比聚丙烯酰胺凝膠低,但它制備容易,分離范圍廣。普通瓊脂糖凝膠分離DNA的范圍為0.2~20 kb,利用脈沖電泳,可分離高達10bp 的DNA片段。


      DNA分子在瓊脂糖凝膠中泳動時有電荷效應和分子篩效應。DNA分子在高于等電點的pH溶液中帶負電荷,在電場中向正極移動。由于糖-磷酸骨架在結(jié)構(gòu)上的重復性質(zhì),相同數(shù)量的雙鏈DNA幾乎具有等量的凈電荷,因此它們能以同樣的速率向正極方向移動。


      操作流程

      準備干凈的配膠板和電泳槽

      注意DNA酶污染的儀器可能會降解DNA,造成條帶信號弱、模糊甚至缺失的現(xiàn)象。


      選擇電泳方法

      一般的核酸檢測只需要瓊脂糖凝膠電泳就可以;如果需要分辨率高的電泳,特別是只有幾個bp的差別應該選擇聚丙烯酰胺凝膠電泳;用普通電泳不合適的巨大DNA鏈應該使用脈沖凝膠電泳。注意巨大的DNA鏈用普通電泳可能跑不出膠孔導致缺帶。


      正確選擇凝膠濃度

      對于,濃度通常在0.5~2%之間,低濃度的用來進行大片段核酸的電泳,高濃度的用來進行小片段分析。低濃度膠易碎,小心操作和使用質(zhì)量好的瓊脂糖是解決辦法。注意高濃度的膠可能使分子大小相近的DNA帶不易分辨,造成條帶缺失現(xiàn)象。


      適合的電泳緩沖液

      常用的緩沖液有TAE和TBE,而TBE比TAE有著更好的緩沖能力。電泳時使用新制的緩沖液可以明顯提高電泳效果。注意電泳緩沖液多次使用后,離子強度降低,pH值上升,緩沖性能下降,可能使DNA電泳產(chǎn)生條帶模糊和不規(guī)則的DNA帶遷移的現(xiàn)象。


      電泳的合適電壓和溫度

      電泳時電壓不應該超過20V/cm,電泳溫度應該低于30℃,對于巨大的DNA電泳,溫度應該低于15℃。注意如果電泳時電壓和溫度過高,可能導致出現(xiàn)條帶模糊和不規(guī)則的DNA帶遷移的現(xiàn)象。特別是電壓太大可能導致小片段跑出膠而出現(xiàn)缺帶現(xiàn)象


      DNA樣品的純度和狀態(tài)

      注意樣品中含鹽量太高和含雜質(zhì)蛋白均可以產(chǎn)生條帶模糊和條帶缺失的現(xiàn)象。乙醇沉淀可以去除多余的鹽,用酚可以去除蛋白。注意變性的DNA樣品可能導致條帶模糊和缺失,也可能出現(xiàn)不規(guī)則的DNA條帶遷移。在上樣前不要對DNA樣品加熱,用20 mM NaCl緩沖液稀釋可以防止DNA變性。


      DNA的上樣

      正確的DNA上樣量是條帶清晰的保證。注意太多的DNA上樣量可能導致DNA帶型模糊,而太小的DNA上樣量則導致帶信號弱甚至缺失。TIANGEN公司DNA分子量標準每次上樣6ul即可得到清晰均勻的條帶。


      Marker的選擇

      DNA電泳一定要使用DNA Marker或已知大小的正對照DNA來估計DNA pian段大小。Marker應該選擇在目標片段大小附近ladder較密的,這樣對目標片段大小的估計才比較準確。TIANGEN公司的DNA Marker條帶清晰,亮度均勻,質(zhì)量穩(wěn)定,是您實驗的優(yōu)選。需要注意的是Marker的電泳同樣也要符合DNA電泳的操作標準。如果選擇λDNA/HindIII或者λDNA/EcoRI的酶切Marker,需要預先65℃加熱5min,冰上冷卻后使用。從而避免HindIII或EcoRI酶切造成的粘性接頭導致的片段連接不規(guī)則或條帶信號弱等現(xiàn)象。


      凝膠的染色和觀察

      實驗室常用的核酸染色劑是溴化乙錠(EB),染色效果好,操作方便,但是穩(wěn)定性差,具有毒性。而其他系列例如SYBR Green,GelRed,雖然毒性小,但價格昂貴。TIANGEN公司的GeneGreen相比則是性價比高的低毒替代染料,其靈敏度比傳統(tǒng)EB染料高10倍以上。注意觀察凝膠時應根據(jù)染料不同使用合適的光源和激發(fā)波長,如果激發(fā)波長不對,條帶則不易觀察,出現(xiàn)條帶模糊的現(xiàn)象。


      回收

      1.  DNA pian 段的膠回收方法:

      (1)電泳洗脫法

      (2)低熔點挖塊法

      (3)凍融回收法

      (4)玻璃奶回收法

      (5)柱回收法


      2.  膠回收注意事項:

      (1)將電泳槽用ddH2O反復清洗干凈,倒入新鮮配制的滅菌電泳緩沖液。

      (2)根據(jù)點樣量制備合適厚度的瓊脂糖凝膠板。

      (3)切膠時盡可能切掉不含DNA pian段的凝膠。

      (4)要盡量減少DNA在紫外下的照射時間以減少對DNA的損傷。

      (5)熔膠要*。

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